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来源: 发布时间:2023/7/6 13:16:00
本期内容

NanoLuc® 萤光素酶在活体成像中

的应用前景光明


麦主播:蛋糕

主播介绍

大家好,我是麦主播蛋糕。希望我的声音,在带来小知识的同时,在炎炎夏日也给你带来一阵清凉~


Story Introduction

故事内容简介


背景介绍

研究方法

参考文献

资源列表



 背 景 介 绍


NanoLuc®萤光素酶技术的发展为研究人员提供了新的而且更好的工具来研究内源性生物学: 即蛋白质在细胞和组织内的天然环境中是如何表现的。这种小的萤光素酶(约19kDa)来自深海虾Oplophorus gracilirostris,与萤火虫或海肾萤光素酶相比,它具有一些优势特性。关于NanoLuc®萤光素酶的应用概述,请参见以下文章: NanoLuc® Luciferase Powers More than Reporter Assays

NanoLuc®萤光素酶体积小,并且不需要ATP来产生生物发光信号,这使其特别适合作为细胞和活体动物体内生物发光成像的报告基因。作为融合蛋白一部分的小分子报告基因的表达不太可能会干扰靶标蛋白的生物学功能。NanoLuc® Binary Technology (NanoBiT®) 通过创建一个互补型报告基因系统(其中包含一个长度只有11个氨基酸的亚基),将这一方法更进一步提升。以下视频解释了高亲和力的NanoBiT®互补 (HiBiT) 系统是如何工作的。


HiBiT蛋白标签技术资源汇总





研 究 方 法


微型标签用于跟踪病毒

基于NanoLuc®的体内成像的早期应用是研究病毒感染。2013年,Tran等报道了一种可复制的报告基因病毒,用于甲型流感小鼠模型研究(1)。此前的生物发光成像技术常常导致报告基因病毒不稳定,在体内的灵敏度也有限。NanoLuc®报告基因病毒在小鼠中表现出与天然甲型流感病毒相同的致病性和致死率。使用报告基因病毒,研究人员能够跟踪病毒的载量和在肺部的传播。他们的实验结果证明了NanoLuc®报告基因病毒在研究新兴病毒和抗病毒治疗的潜在效果方面的实用性。

最近的一项研究展示了一种构建报告基因病毒的方法,该方法进一步提高了报告基因病毒的稳定性,并为设计报告基因病毒提供了更大的灵活性(2)。在这项研究中,研究人员将HiBiT标签插入修饰过的溶瘤腺病毒基因组中(其表达受病毒E3启动子的控制)。该启动子在感染后不久被病毒E1A蛋白激活。为了证明报告基因病毒的稳定性和功能,研究人员用其感染了表达互补LgBiT多肽的贴壁和悬浮前列腺癌细胞株。他们观察到,在所有待测细胞系感染24小时后,使用Nano-Glo®底物都成功重建了NanoLuc®萤光素酶活性。

在体内成像方面,他们监测了表达LgBiT的细胞是否被报告基因病毒稳定感染,然后用报告基因病毒或对照组感染植入小鼠体内的肿瘤。腹腔内(IP)注射底物显示感染成功,且有良好的底物分布,导致持续的生物发光信号输出。研究人员在这些实验中使用了furimazine的衍生物(hydrofurimazine),因为它可以增加溶解度,并且在成像所需的浓度下,可以很容易地进行腹腔内给药。最近,这种底物和fluorofurimazine(后者提供了更明亮的体内信号)一起被用于开发小鼠体内成像应用(3)。这些新型底物为利用NanoLuc®报告基因技术推进体内研究提供了新的选择。

进一步的感染动力学研究(2)表明溶瘤病毒没有到达整个肿瘤团;然而,这一结果与临床试验中的溶瘤腺病毒研究是一致的。这些作者们得出的结论是,他们的方法适用于研究各种各样的病毒,特别是那些不能耐受较大转基因插入的病毒。


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采用BRET会使之更佳的应用:抗体-受体相互作用研究

对实体瘤或其他组织进行生物发光成像的一个挑战是生物发光反应的发射波长。血红蛋白主要在可见光谱的蓝色和绿色区域吸收;因此,理想的生物发光反应会在远红区域发光(4)。NanoLuc®萤光素酶反应在蓝色区域的460nm处发光。虽然传统上已经将具有合适发射波长的荧光染料用于体内成像,但却由于需要外部激发源而使其应用受到限制。

生物发光共振能量转移(BRET)具有两全其美的优势: 小体积的NanoLuc®萤光素酶标签和明亮的荧光分子。在BRET中,当供体萤光素酶底物与荧光受体分子紧密接近时,能量就会从底物转移到荧光受体分子上。然后荧光分子在其最佳波长处重新产生发射光。由于NanoLuc®萤光素酶不依赖于ATP,因此它也可被用于那些报告基因在细胞外表达的BRET应用中,从而为研究细胞表面的分子相互作用创造了新的可能性。
Tang等人利用BRET研究了治疗性抗体与活体动物受体的结合(5)。他们将NanoLuc®萤光素酶融合到表皮生长因子受体(EGFR)的N-端,并使用与治疗性抗体西妥昔单抗(cetuximab)共价结合的荧光染料DY605作为受体。当将furimazine单独添加到NanoLuc®-EGFR融合蛋白中时,在460nm处产生了预期的发射峰,而抗体结合则在625nm处产生了额外的发射峰。如同在细胞培养中所表征的,这两个发射峰之间的间隔足以进行可靠而灵敏的检测。
在体内实验中,研究人员使用裸鼠肿瘤移植模型验证了西妥昔单抗(cetuximab)的受体占有率和药代动力学。他们观察到即使在高于西妥昔单抗治疗剂量的情况下,受体仍处于不完全占有的情况,这表明只有一小部分受体可供抗体结合。尽管存在一些技术上的限制,BRET被证明是一种建立西妥昔单抗与EGFR结合的剂量反应关系的一种有效的无创成像技术。该文作者们指出,该方法可推广应用于其它治疗性抗体的药效和毒性研究中。
一种可替代BRET的方法是将生物发光蛋白和荧光蛋白融合。例如Antares报告基因系统的开发,在该系统中,将NanoLuc®萤光素酶融合到两个拷贝的青色可激发的橙色荧光蛋白1 (Cy-OFP1)上。Making BRET the Bright Choice for In vivo Imaging: Use of NanoLuc® Luciferase with Fluorescent Protein Acceptors一文对此方法进行了总结。Su等人(3)使用Antares报告基因和萤火虫萤光素酶报告基因对小鼠的两个细胞群进行了体内成像。他们能够测量肿瘤的大小,也能在同一动物中观察嵌合抗原受体(CAR) T细胞的迁移。
如想了解更多关于NanoLuc®萤光素酶的体内成像应用,或查询新的检测方案,请查看我们的NanoLuc® Bioluminescence Imaging资源页面。



参 考 文 献


1. Tran, V. et al. (2013) Highly sensitive real-time in vivo imaging of an influenza reporter virus reveals dynamics of replication and spread. J. Virol. 87, 13321.

2. Gaspar, N. et al. (2020) NanoBiT system and hydrofurimazine for optimized detection of viral infection in mice—a novel in vivo imaging platform. Int. J. Mol. Sci. 21, 5863.

3. Su, Y. et al. (2020) Novel NanoLuc substrates enable bright two-population bioluminescence imaging in animals. Nat. Methods 17, 852–860.

4. Zhao, H. et al. (2005) Emission spectra of bioluminescent reporters and interaction with mammalian tissue determine the sensitivity of detection in vivo. J. Biomed. Optics 10(4), 041210.

5. Tang, Y. et al. (2019) A bioluminescence resonance energy transfer-based approach for determining antibody-receptor occupancy in vivo. iScience 15, 439–451.



其 他 资 源

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